正式测定前务必取 2-3 个预期差异较大的样本做预测定

测定意义

SSS(EC 2.4.1.21)通常以游离态存在于质体基质中，催化淀粉链延长，主要负责支链淀粉的合成。

测定原理

SSS 催化 ADPG 与淀粉引物(葡聚糖)反应，将葡萄糖分子转移到淀粉引物上，同时生成 ADP，在反应体系中添加的丙酮酸激酶、己糖激酶和 6-磷酸葡萄糖脱氢酶依次催化 NADP+还原为 NADPH，NADPH 生成量与前一步反应中 ADP 生成量呈正比，340nm 下测定 NADPH 增加量即可计算 SSS 活性。

需自备的的仪器和用品

紫外分光光度计/酶标仪、水浴锅、台式离心机、可调式移液器、微量石英比色皿/96 孔板、研钵、冰和蒸馏水。

试剂的组成和配制

提取液：液体 100mL×1 瓶，4℃保存；

试剂一：40mL×1 瓶，4℃保存；

试剂二：粉剂×1 瓶，4℃保存；临用前加入 14mL 试剂一充分混匀备用；用不完的试剂分装后-20℃保存，禁止反复冻融；

试剂三：粉剂×1 瓶，4℃保存；临用前加入 8mL 试剂一充分混匀备用；用不完的试剂分装后-20℃保存，禁止反复冻融；

试剂四：粉剂×1 瓶，4℃保存；临用前加入 10mL 试剂一充分混匀备用；用不完的试剂分装后-20℃保存，禁止反复冻融；

试剂五：液体×1 支，-20℃保存；临用前加入 500μL 蒸馏水，充分溶解备用；用不完的试剂分装后-20℃保存，禁止反复冻融；

试剂六：粉剂×1 支，-20℃保存；临用前加入 500μL 蒸馏水，充分溶解备用；用不完的试剂分装后-20℃保存，禁止反复冻融；

粗酶液制备

按照组织质量(g)：提取液体积(mL)为 1：5～10 的比例(建议称取约 0.1g 组织，加入 1mL提取液)，进行冰浴匀浆。10000g 4℃离心 10min，取上清，置冰上待测。

测定步骤

1、分光光度计或酶标仪预热 30min 以上，调节波长至 340nm，蒸馏水调零。

2、在 EP 管中按顺序加入下列试剂

混匀，30℃保温 20 min，置沸水浴中 1 min(盖紧，防止水分散失)，冰浴冷却

混匀，30℃保温 30 min，置沸水浴中 1 min(盖紧，防止水分散失)，冰浴冷却，10000g 4℃ 离心 10min，取上清液(如果一次性测定样本较多，可以将试剂四、五和六按比例配成混合液)

混匀后立即 340 nm 波长下记录初始吸光度 A1 和 2min 后的吸光度 A2，计算 ΔA=A2-A1。

注意：试剂二如有沉淀，加入之前要使之充分溶解混匀。

SSS 活性计算

a.使用微量石英比色皿测定的计算公式如下：

1、按样本蛋白浓度计算：

单位的定义：每 mg 组织蛋白每分钟催化产生 1nmol NADPH 定义为一个酶活力单位。

SSS(nmol/min/mg prot)＝[ΔA×V 反总÷(ε×d)×10⁹]÷(Cpr×V 样)÷T×稀释倍数=529×ΔA÷Cpr

此法需要自行测定样本蛋白质浓度。

2、按照样本鲜重计算

单位的定义：每 g 组织每分钟催化产生 1nmol NADPH 定义为一个酶活力单位。

SSS 活性(nmol/min/g 鲜重)=[ΔA×V 反总÷(ε×d)×10⁹]÷(V 样÷V 样总×W)÷T×稀释倍数=529×ΔA÷W

V 反总：反应体系总体积，2.6×10^-4 L；ε：NADPH 摩尔消光系数，6.22×10³ L/ mol/cm；d： 比色皿光径，1cm；V 样：加入样本体积，0.075 mL；V 样总：加入提取液体积，1 mL；T： 反应时间，2 min；稀释倍数：1.9；Cpr：样本蛋白质浓度，mg/mL；W：样本质量。

b.使用 96 孔板测定的计算公式如下：

1、按样本蛋白浓度计算：

单位的定义：每 mg 组织蛋白每分钟催化产生 1nmol NADPH 定义为一个酶活力单位。

SSS(nmol/min/mg prot)＝[ΔA×V 反总÷(ε×d)×10⁹]÷(Cpr×V 样)÷T×稀释倍数=1059×ΔA÷Cpr

此法需要自行测定样本蛋白质浓度。

2、按照样本鲜重计算

单位的定义：每 g 组织每分钟催化产生 1nmol NADPH 定义为一个酶活力单位。

SSS 活性(nmol/min/g 鲜重)=[ΔA×V 反总÷(ε×d)×10⁹]÷(V 样÷V 样总×W)÷T×稀释倍数 =1059×ΔA÷W

V 反总：反应体系总体积，2.6×10^-4 L；ε：NADPH 摩尔消光系数，6.22×10³ L/ mol/cm；d：96 孔板光径，0.5cm；V 样：加入样本体积，0.075 mL；V 样总：加入提取液体积，1 mL；T：反应时间，2 min；稀释倍数：1.9；Cpr：样本蛋白质浓度，mg/mL；W：样本质量。